CUADERNO DE PRÁCTICAS

PRÁCTICA 13: MITOSIS EN LA RAÍZ DE LA CEBOLLA OBJETIVO:   La raíz de la cebolla está formada por células y forman el tejido meristemático. Estas células, como sabemos, se dividen por mitosis, que es el proceso que observaremos en la práctica de hoy. Lo haremos tiñendo las células y los cromosomas para poder observarlo en el microscopio. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Microscopio - Portas y cubres - Vidrio de reloj - Pinzas finas - Bisturí - Tiras de papel de filtro - Pinzas de madera - Mechero - Vaso de precipitados - Reactivos: - Orceína acética clorhídrica (A y B) - Materiales biológicos: - Bulbo de una cebolla - Agua METODOLOGÍA:   Lo ideal sería dejar durante 5 días el bulbo de la cebolla en un vaso con agua en contacto con las raíces de la cebolla. Así, las raíces crecerán y continuarán su división mitótica. Primeramente, cortamos los apéndices de la cebolla con un bisturí y ponemos 3 o 4 en un vidrio de reloj. Vertemos en la muestra aproximadamente 2 m...

PRÁCTICA 12: EXTRACCIÓN DE ADN OBJETIVO:   El ADN se extrae porque sus cargas negativas atraen los iones salinos, los disuelven y permiten la extracción de la célula.  Vamos a extraer ADN de una hoja de lechuga y un plátano timando sus trozos con un poco de agua. Así, conseguiremos un caldo molecular que, al mezclarlo con una disolución tampón con detergente, el ADN se disolverá. Y con alcohol isoamílico extraeremos posteriormente el ADN, ya que funciona como reactivo. MATERIALES: - Materiales de laboratorio: - Nevera - Tubos de ensayo - Vaso de precipitados - Papel secante - Pipetas - Mortero - Varilla - Gradilla - Colador - Reactivos: - Alcohol isoamílico  - 5 ml de detergente  - 1,5 g de sal de mesa - 5 g de bicarbonato sódico - Granos de arena - Materiales biológicos: - Hoja de lechuga - Plátano - 120ml de agua destilada METODOLOGÍA:   Primero, preparamos la disolución tampón mezclando 120ml de agua destilada,  1,5 g de sal de mesa, 5 g de bicarbonato s...

PRÁCTICA 11: SOLUBILIDAD OBJETIVO:   Sabemos que los lípidos son insolubles en agua y solubles en disolventes orgánicos. Vamos a comprobarlo. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Tubos de ensayo - Gradilla - Pipetas - Materiales orgánicos: - Aceite de oliva - Agua - Acetona METODOLOGÍA: En primer lugar, echaremos 2 ml de aceite de oliva en 2 tubos de ensayo. Añadiremos 2 ml de agua en uno y 2 ml de acetona en el otro. Y finalmente, agitaremos enérgicamente ambos y observamos los resultados tras dejarlos reposar. RESULTADOS:   Disolución acetona/éter con aceite. Comprobamos que sí se disuelve. Disolución agua y aceite. Comprobamos que no se disuelve, no se mezclan. Comparamos CONCLUSIONES:   Confirmamos nuestra hipótesis al comprobar que el aceite se disuelve en acetona por ser un disolvente orgánico y en agua no.

PRÁCTICA 10: TINCIÓN OBJETIVO:  Debemos saber que el Sudán III es una base orgánica que colorea los lípidos de rojo-anaranjado. Vamos a comprobarlo con aceite de oliva. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Tubo de ensayo - Gradilla - Pipetas - Materiales orgánicos: - Aceite de oliva - Sudán III METODOLOGÍA:  Para empezar, echamos 2 ml de aceite de oliva y 4-5 gotas de Sudán III en un tubo de ensayo. Después, lo movemos hasta que se mezcle y observamos cómo se tiñe todo el aceite. RESULTADOS:   Muestra de aceite de oliva y Sudán III CONCLUSIONES:  Comprobamos que el Sudán III es un colorante selectivo de lípidos, y por tanto tiñe al completo el aceite de oliva.

 PRÁCTICA 9: SAPONIFICACIÓN  OBJETIVO: Ya sabemos que   las grasas se descomponen en glicerina y ácidos grasos al entrar en contacto con calor e hidróxido sódico. Se suele usar esto para hacer jabón con las partes de los ácidos grasos y las sales de sodio. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Tubo de ensayo - Gradilla - Mechero - Vaso de precipitados - Pipetas - Reactivos: - Disolución de NaOH al 20% - Materiales orgánicos: - Aceite de oliva - Agua METODOLOGÍA: Primeramente, echamos en un tubo 2 ml de aceite de oliva y 2 ml de la disolución de NaOH. Agitamos con fuerza y lo colocamos en un vaso de precipitados con agua al baño María durante 20/30 minutos y observamos resultados. RESULTADOS: Podemos diferenciar 3 capas: la más baja que corresponde con la sosa sobrante y la glicerina formada, la del medio que sería el jabón formado y la última es la capa de aceite que no se ha visto afectada.   CONCLUSIONES:   Hemos comprobado que el a...

 PRÁCTICA 8: REACCIONES COLOREADAS ESPECÍFICAS (BIURET) OBJETIVO: Debemos saber que la reacción de Biuret es una reacción coloreada específica de las proteínas que sirve para identificarlas. Péptidos y las proteínas dan positivo en la reacción, al contrario que los aminoácidos, debido a su enlace peptídico CO-NH, que se destruye cuando los aminoácidos se liberan.  El Biuret lleva sulfato de cobre (II) y sosa. El Cu se une a los enlaces peptídicos y dando color violeta cuando se encuentra en un medio alcalino. Comprobaremos la presencia de proteínas en una disolución de albúmina y en la leche. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Tubos de ensayo - Gradilla - Reactivos: - Disolución de SO 4 Cu al 1% NaOH al 20% - Materiales biológicos: - Disolución de albúmina al 2% - Leche - Agua METODOLOGÍA: Para empezar, echamos 3 ml de la disolución de albúmina en un tubo de ensayo, 3 ml de leche en otro, y 3 ml de agua en otro (como experimento de control, ...

PRÁCTICA 7: COAGULACIÓN DE LAS PROTEÍNAS OBJETIVO:   Las proteínas forman coloides en disolución con el agua y cuando las calentamos a temperaturas altas de 70°C o añadimos disoluciones salinas, ácidas, u otras, estas precipitan y se forman coágulos. Es un proceso irreversible y se produce a causa de la desnaturalización por los hechos mencionados anteriormente, ya que cuando actúan sobre la proteína desordenan y destruyen su estructura terciaria y secundaria. Observaremos estos procesos en la leche. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Pinzas de madera - Tubos de ensayo - Gradilla - Mechero - V aso de precipitados Pipetas - Reactivos: - Disolución de HCl al 10% - Alcohol etílico - Materiales biológicos: - Leche METODOLOGÍA:   Primeramente, pondremos  3 tubos de ensayo con 3 ml de leche en cada uno. Añadiremos 3 ml de HCl a uno y 3 ml de alcohol etílico a otro. Calentamos al baño María el tubo que sobra y esperamos para observar resultado...

PRÁCTICA 6: INVESTIGACIÓN DE POLISACÁRIDOS OBJETIVO:   Como sabemos, el  almidón está formado por amilopectina y amilosa. Esta, se tiñe de color azul si el yodo se fija o es absorbido por su superficie, siempre y cuando ocurra en frío.  Veremos si se da esta reacción en un trozo de pan y en una disolución de almidón.  También sabemos que, durante la masticación, el almidón se rompe en maltosa gracias a amilasa salivar.  Comprobaremos que esto es cierto mediante una reacción de Fehling. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Pinzas de madera -  Tubos de ensayo - Gradilla - Espátula - Matraces - Báscula - Mechero - Pipetas de 25 ml con pipeteadores - Marcador de vidrio - Placa de Petri - Reactivos: - Alcohol metílico - Disolución de Fehling A - Disolución de Fehling B - Disolución de Lugol (que contiene yodo y yoduro potásico) - Materiales biológicos: - Agua del grifo - Almidón - Pan METODOLOGÍA:   En primer lugar, colocamos en...

PRÁCTICA 5: HIDRÓLISIS DE LA SACAROSA OBJETIVO:   Como sabemos, la sacarosa es un disacárido sin carbonos anoméricos libres, y por tanto no tiene poder reductor. Si hidrolizamos la sacarosa añadiendo una molécula de agua, esta se divide en dos monosacáridos de glucosa y fructosa, ambas reductoras. Vamos a demostrarlo hidrolizando la sacarosa con calor y con HCl, y después comprobaremos si ha dado los resultados esperados mediante la prueba de Fehling. MATERIALES: - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Pinzas de madera - Tubos de ensayo - Gradilla - Espátula - Matraces - Báscula - Mechero - Pipetas de 25 ml con pipeteadores - Marcador de vidrio - Reactivos: - Alcohol metílico - Disolución de Fehling A - Disolución de Fehling B - HCl diluido al 10% - Disolución de bicarbonato de sodio al 10% - Materiales biológicos: - Sacarosa - Agua del grifo METODOLOGÍA:  En primer lugar, ponemos 3 ml de la disolución anterior de sacarosa (al 5%) en un tubo de ensayo.  Calentamos ...

PRÁCTICA 4: OBSERVACIÓN DE AZÚCARES REDUCTORES Y NO REDUCTORES OBJETIVO:  En esta práctica pretendemos observar los azúcares reductores y no reductores. Un azúcar reductor es el que que posee intacto su grupo hidroxilo del carbono anomérico y a través de este pueden reaccionar como reductores de otras moléculas que actuarán como oxidantes. Todos los monosacáridos y la mayoría de los disacáridos son azúcares con poder reductor.  Para comprobar si tienen esta característica, haremos una reacción redox entre el azúcar que estudiamos y el sulfato de Cobre (II), que en disolución presenta color azul. Al producirse esta reacción se produce óxido de cobre (I), de color rojizo.  Tras esta reacción, según el color que presente la disolución del azúcar, determinaremos si es reductor o no. MATERIALES: - Materiales de laboratorio: - Báscula -  Marcador de vidrio - Tubos de ensayo - Gradilla - Espátula - Matraces - Papel secante - Mechero - Pipetas y pipeteadores - Pinzas de...

PRÁCTICA 3: OBSERVACIÓN DE LOS PROCESOS OSMÓTICOS EN LA EPIDERMIS DE UNA CEBOLLA OBJETIVO: En esta práctica podremos observar los procesos osmóticos que se dan en la epidermis de una cebolla y podremos ver las diferencias de estos procesos según la concentración del agua que ponemos en contacto. MATERIALES: - Materiales de laboratorio: - 3 portas y 3 cubres - Papel de laboratorio - Marcador de vidrio - Cuentagotas - Materiales biológicos: - Capa epidérmica de una cebolla (células vegetales de la misma) METODOLOGÍA: Necesitaremos tres preparaciones, una para estudiar los procesos osmóticos en las células vegetales al entrar en contacto con agua del grifo, otro al juntarse con agua destilada y otro con agua saturada de sal.  Cortamos tres trozos de la capa epidérmica de la cebolla que sacamos de su parte cóncava.  Los colocamos en un porta y marcamos cada uno con algo significativo, como letras para diferenciar las preparaciones.  En el que marcamos una G, vertemos una gota...