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OBSERVACIÓN DE ÓRGANOS VEGETALES

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PRÁCTICA 15: OBSERVACIÓN DE ÓRGANOS VEGETALES OBJETIVO:   Tomaremos algunas flores y plantas para observar más de cerca algunos de sus órganos vegetales contrastándolo con lo que ya sabemos de fisiología vegetal. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Pinzas/bisturí - Lupa binocular - Materiales biológicos: -  Papaver rhoeas  (amapola roja) -  Philadelphus coronarius - Bellis perennis (margarita) -  Taraxacum officinale   METODOLOGÍA:   Tomaremos flores y plantas para la observación. Con ayuda de unas pinzas o un bisturí separamos los órganos que podemos diferenciar a simple vista, como los pétalos, para poder observarlos mejor en la lupa binocular. Comenzamos la observación y el análisis teniendo en cuenta lo que sabemos de fisiología vegetal. RE SULTADOS:   Taraxacum officiale . Lo que llamaríamos pétalo son flores ya abiertas. Gineceo de la Papaver rhoeas Estambres y granos de polen de la Papaver rhoeas Estambres y pistilo de la Phil...

EXTRACCIÓN DE PIGMENTOS FOTOSINTÉTICOS

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PRÁCTICA 14: EXTRACCIÓN DE PIGMENTOS FOTOSINTÉTICOS OBJETIVO:  Las plantas constan de unos pigmentos que le dan su coloración verde característica, estos pigmentos también captan luz para la fotosíntesis. En la práctica extraeremos dichos pigmentos de hojas anteriormente recogidas. MATERIALES: -  Materiales de laboratorio: - Mortero - Tubos de ensayo - Pinzas - Placa de Petri - Pipeta - Rotuladores - Vaso de precipitados - Reactivos: - Acetona - Alcohol - Materiales biológicos: - Hojas METODOLOGÍA: Antes de extraer los pigmentos fotosintéticos e las hojas mediante el principio de cromatografía (separación de dos o más compuestos con distintas propiedades físicas que hace que se repartan en una fase a la que llamamos estacionaria y una móvil), debemos demostrarlo. Dibujamos unos círculos de distinto color con unos rotuladores en un papel de filtro. Introducimos ese papel en un vaso de precipitados con alcohol. Dejamos que repose y vemos cómo suben los pigmentos del rotulador se...

MITOSIS EN LA RAÍZ DE LA CEBOLLA

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PRÁCTICA 13: MITOSIS EN LA RAÍZ DE LA CEBOLLA OBJETIVO:   La raíz de la cebolla está formada por células y forman el tejido meristemático. Estas células, como sabemos, se dividen por mitosis, que es el proceso que observaremos en la práctica de hoy. Lo haremos tiñendo las células y los cromosomas para poder observarlo en el microscopio. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Microscopio - Portas y cubres - Vidrio de reloj - Pinzas finas - Bisturí - Tiras de papel de filtro - Pinzas de madera - Mechero - Vaso de precipitados - Reactivos: - Orceína acética clorhídrica (A y B) - Materiales biológicos: - Bulbo de una cebolla - Agua METODOLOGÍA:   Lo ideal sería dejar durante 5 días el bulbo de la cebolla en un vaso con agua en contacto con las raíces de la cebolla. Así, las raíces crecerán y continuarán su división mitótica. Primeramente, cortamos los apéndices de la cebolla con un bisturí y ponemos 3 o 4 en un vidrio de reloj. Vertemos en la muestra aproximadamente 2 m...

EXTRACCIÓN DE ADN

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PRÁCTICA 12: EXTRACCIÓN DE ADN OBJETIVO:   El ADN se extrae porque sus cargas negativas atraen los iones salinos, los disuelven y permiten la extracción de la célula.  Vamos a extraer ADN de una hoja de lechuga y un plátano timando sus trozos con un poco de agua. Así, conseguiremos un caldo molecular que, al mezclarlo con una disolución tampón con detergente, el ADN se disolverá. Y con alcohol isoamílico extraeremos posteriormente el ADN, ya que funciona como reactivo. MATERIALES: - Materiales de laboratorio: - Nevera - Tubos de ensayo - Vaso de precipitados - Papel secante - Pipetas - Mortero - Varilla - Gradilla - Colador - Reactivos: - Alcohol isoamílico  - 5 ml de detergente  - 1,5 g de sal de mesa - 5 g de bicarbonato sódico - Granos de arena - Materiales biológicos: - Hoja de lechuga - Plátano - 120ml de agua destilada METODOLOGÍA:   Primero, preparamos la disolución tampón mezclando 120ml de agua destilada,  1,5 g de sal de mesa, 5 g de bicarbonato s...

SOLUBILIDAD (observación de lípidos)

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PRÁCTICA 11: SOLUBILIDAD OBJETIVO:   Sabemos que los lípidos son insolubles en agua y solubles en disolventes orgánicos. Vamos a comprobarlo. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Tubos de ensayo - Gradilla - Pipetas - Materiales orgánicos: - Aceite de oliva - Agua - Acetona METODOLOGÍA: En primer lugar, echaremos 2 ml de aceite de oliva en 2 tubos de ensayo. Añadiremos 2 ml de agua en uno y 2 ml de acetona en el otro. Y finalmente, agitaremos enérgicamente ambos y observamos los resultados tras dejarlos reposar. RESULTADOS:   Disolución acetona/éter con aceite. Comprobamos que sí se disuelve. Disolución agua y aceite. Comprobamos que no se disuelve, no se mezclan. Comparamos CONCLUSIONES:   Confirmamos nuestra hipótesis al comprobar que el aceite se disuelve en acetona por ser un disolvente orgánico y en agua no.

TINCIÓN (observación de lípidos)

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PRÁCTICA 10: TINCIÓN OBJETIVO:  Debemos saber que el Sudán III es una base orgánica que colorea los lípidos de rojo-anaranjado. Vamos a comprobarlo con aceite de oliva. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Tubo de ensayo - Gradilla - Pipetas - Materiales orgánicos: - Aceite de oliva - Sudán III METODOLOGÍA:  Para empezar, echamos 2 ml de aceite de oliva y 4-5 gotas de Sudán III en un tubo de ensayo. Después, lo movemos hasta que se mezcle y observamos cómo se tiñe todo el aceite. RESULTADOS:   Muestra de aceite de oliva y Sudán III CONCLUSIONES:  Comprobamos que el Sudán III es un colorante selectivo de lípidos, y por tanto tiñe al completo el aceite de oliva.

SAPONIFICACIÓN (observación de lípidos)

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 PRÁCTICA 9: SAPONIFICACIÓN  OBJETIVO: Ya sabemos que   las grasas se descomponen en glicerina y ácidos grasos al entrar en contacto con calor e hidróxido sódico. Se suele usar esto para hacer jabón con las partes de los ácidos grasos y las sales de sodio. MATERIALES:   - Materiales de laboratorio: - Papel secante - Tubo de ensayo - Gradilla - Mechero - Vaso de precipitados - Pipetas - Reactivos: - Disolución de NaOH al 20% - Materiales orgánicos: - Aceite de oliva - Agua METODOLOGÍA: Primeramente, echamos en un tubo 2 ml de aceite de oliva y 2 ml de la disolución de NaOH. Agitamos con fuerza y lo colocamos en un vaso de precipitados con agua al baño María durante 20/30 minutos y observamos resultados. RESULTADOS: Podemos diferenciar 3 capas: la más baja que corresponde con la sosa sobrante y la glicerina formada, la del medio que sería el jabón formado y la última es la capa de aceite que no se ha visto afectada.   CONCLUSIONES:   Hemos comprobado que el a...